Interacción parásito-hospedador en fasciolosis ovina: mecanismos de respuesta en fases tempranas y tardías
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Author
Pérez Caballero, Raúl
Director/es
Buffoni Perazzo, LeandroMartínez-Moreno, Álvaro
Publisher
Universidad de Córdoba, UCOPressDate
2019Subject
OvejasEnfermedades parasitarias
Fasciola hepatica
Fasciolosis
Respuesta inmunitaria
Hospedadores
Anatomía patológica veterinaria
METS:
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Fasciola hepatica es el agente etiológico de la fasciolosis, enfermedad
descrita como la principal causa de pérdidas económicas en el sector
agrícola y ganadero en países desarrollados y en vías de desarrollo como
consecuencia de las tasas de morbilidad y mortalidad que origina en los
animales de abasto. La OMS la describe como una enfermedad
parasitaria re-emergente con un especial impacto en humanos alrededor
de todo el mundo.
Entre los distintos principios activos disponibles para hacer frente a esta
enfermedad, el triclabendazol se erigió como el fármaco de elección en
el tratamiento de la fasciolosis. Debido al uso de antihelmínticos como
único medio eficaz para el control de la infección, se hace necesario el
estudio e implementación de vías alternativas que permitan el control de
esta enfermedad, como la obtención de líneas genéticas resistentes o el
desarrollo de vacunas.
La infección por F. hepatica desencadena la actuación de la respuesta
inmunitaria como consecuencia del reconocimiento de numerosos
antígenos de excreción-secreción (FhESPs) o de la superficie del
parásito. Estas moléculas han sido identificadas y purificadas con el fin
de realizar ensayos vacunales con los que determinar su capacidad
inmunógena y qué antígeno pudiera constituir el candidato idóneo de una
vacuna eficaz. La mayoría de los estudios vacunales realizados en rumiantes se han centrado en el empleo de antígenos obtenidos a partir
de la fase adulta del parásito, si bien se torna de vital importancia
identificar áquellos que juegan un papel relevante durante todas las fases
de la infección.
Con este motivo, se empleó en un primer estudio un antígeno (rFh14-
3-3z) de la familia de proteínas 14-3-3, con el que poder determinar el
perfil inmunológico y el componente parasitológico, haciendo hincapié
en el número de fasciolas asentadas en hígado y la dinámica de
eliminación de huevos en heces.
Se usaron 24 ovejas de raza merina de seis meses de edad divididas
aleatoriamente en tres grupos (n=8) con el siguiente modelo: el grupo 1
fue inmunizado con la proteína recombinante Fh14-3-3z y el adyuvante
Montanide™ ISA 71 VG, el grupo 2 se inmunizó únicamente con
Montanide™ ISA 71 VG (control adyuvante) y el grupo 3 fue el grupo
control de infección (infectado y no vacunado). Ocho semanas
posteriores a la primera inmunización los animales fueron infectados
oralmente con una única dosis de 150 metacercarias. A las 6 semanas de
la infección se realizó un muestreo de heces semanalmente a todos los
animales para analizar la dinámica de eliminación de huevos mediante
McMaster con sulfato de zinc. La presencia de huevos en heces se
detectó a las 8 semanas post-infección en el grupo 1 y las 9 semanas en los grupos 2 y 3. De la misma manera, una vez sacrificados se recogieron
los adultos de F. hepatica de los hígados para realizar su recuento, así
como la medición de los vermes. El grupo 1 presentó una carga de 52’25
± 16’71 fasciolas, similar al grupo 3 con una carga media de 51’13 ±
12’84 y el grupo 2 evidenció una mayor carga parasitaria con 68’13 ±
23’79 adultos. La respuesta inmunitaria humoral, para los isotipos IgG1
e IgG2, analizada mediante ELISA indirecto mostró un incremento
significativo en IgG1 tres semanas después de la inmunización, mientras
que IgG2 aumenta su producción significativamente únicamente después
de la inmunización en el grupo 2.
Debido a los ensayos que han demostrado la falta de protección en
animales inmunizados con diferentes antígenos de F. hepatica y a la
capacidad inmunomoduladora del parásito se hace necesario conocer la
respuesta inmunitaria que se desencadena en las primeras fases de la
infección. Por ello, el segundo estudio tuvo como objetivo el análisis
poblacional de linfocitos (TCD4, TCD8 y WC1+γδ), macrófagos
(CD14), MHCII como célula presentadora de antígenos y células
dendríticas (CD83) de cavidad peritoneal de animales infectados y
sacrificados en fases iniciales y tardías. En este ensayo se emplearon 37
ovejas de raza merina de seis meses de edad, las cuales fueron divididas
aleatoriamente en tres grupos atendiendo al momento del sacrificio: el grupo 1 (n=20) (estadios tempranos) y grupo 2 (n=10) (estadios tardíos)
fueron infectados con una dosis de 150 metacercarias. Los animales del
grupo 1 fueron sacrificados a los 1, 3, 9 y 18 días post-infección (dpi),
así mismo, el grupo 2 fueron sacrificados a las 14 semanas post-infección
(spi). El grupo 3 no se infectó y se describió como grupo control
negativo. Los parámetros parasitológicos del grupo 2 mostraron una
carga parasitaria de 67’78 ± 13’85 adultos con una tasa de implantación
con niveles de 45’19% ± 9’24. La presencia de huevos en heces se
detectó a las 8 semanas de la infección, alcanzando su máximo a la
semana 13. El análisis de las distintas poblaciones leucocitarias se
determinó mediante citometría de flujo con distintos anticuerpos
monoclonales. Los animales sacrificados en las fases tempranas
únicamente mostraron un descenso significativo de los TCD4 a los 1 y
18 dpi. Asimismo, la población de CD14 peritoneal evidenció un
descenso a las 9 y 18 dpi, mientras que MHCII y CD83 describen un
patrón similar con una significativa disminución a los 3 y 9 dpi. Los
animales sacrificados a las 14 semanas aumentaron significativamente
su población de WC1+γδ pero sufrieron un descenso significativo en las
subpoblaciones de macrófagos y células dendríticas peritoneales.
Continuando con una mejor compresión de los mecanismos defensivos
del hospedador frente a esta enfermedad, el tercer trabajo realizado tuvo como objetivo analizar la dinámica poblacional en líquido
peritoneal y la producción de radicales libres en animales infectados y
vacunados. Para este estudio se emplearon 45 ovejas de raza merina de
seis meses de edad agrupadas aleatoriamente como se describe: el grupo
1 (n=5) fueron animales no infectados ni vacunados y fue descrito como
grupo control negativo, el grupo 2 (n=20) fue experimentalmente
infectado con 150 metacercarias y el grupo 3 (n=20) fue inmunizado con
rFhCL1 e infectado con 150 metacercarias. El grupo 1 fue sacrificado a
las 12 spi mientras que los grupos 2 y 3 fueron sacrificados a los 1, 3, 9
y 18 dpi. La respuesta inmunitaria humoral evidenció diferencias
significativas en IgG1 desde las 6ª semana post-vacunación en el grupo
3 y únicamente a los 1 dpi para IgG2. El número total de leucocitos
reveló un aumento significativo a los 9 y 18 dpi para el grupo 2 y 3. Más
específicamente, el grupo 2 evidenció un aumento significativo de
granulocitos a los 9 dpi y de las tres poblaciones peritoneales a los 18
dpi. Por su parte, el grupo 3 aumentó el número de linfocitos a los 3 y 18
dpi, así como la población de macrófagos y granulocitos a los 9 y 18 dpi.
La medición de radicales libres por parte de los leucocitos se determinó
mediante citometría de flujo usando 2 reactivos diferentes: DAF-2DA
para el óxido nítrico y DCFH-DA para el peróxido de hidrógeno. En
relación a la producción H2O2, el grupo 2 incrementó su producción por parte de los macrófagos a los 3 y 9 dpi, y a los 18 dpi por parte de los
granulocitos. Asimismo, los granulocitos en el grupo 3 mostraron un
aumento de este radical libre a los 9 y 18dpi. Finalmente, la producción
de NO en el grupo 2 sufrió un incremento significativo por parte de los
granulocitos a los 9 y 18 dpi y en los macrófagos a los 18 dpi. Sin
embargo, el grupo 3 aumentó la producción de NO a los 3 dpi por parte
de los macrófagos y a los 3, 9 y 18 dpi en los granulocitos. Fasciola hepatica is the ethyological agent of fasciolosis, a disease
described as the major cause of economic losses to the agricultural
industry in developed and developing countries due to the high morbility
and mortility rates in livestock. It has been described as a tropical reemerging
disease by the WHO.
Triclabendazole is the drug of choice against fasciolosis, among different
drugs available for the control of the disease. Due to the use of
anthelmintic as the only effective mean for the control of the infection,
alternative ways for disease control are required, as genetically resistant
species or the development of vaccines.
Fasciola hepatica infection triggers the immune response as a
consequence of the recognition of numerous excretory and secretory
products (FhESPs) or tegumental proteins. These molecules have been
identified and purified in order to perform vaccine trials aimed at
determining their immunogenic capacity so as to develop a vaccine.
Most of the vaccine trials carried out in ruminants had been conducted
using the adult fluke antigens that are exposed to the immune system.
Therefore, it is essential to identify the molecules that play a key role
during the course of infection. On this reason, an antigen from the 14-3-3 protein family (14-3-3z) has
been used in a first study. With the use of rFh14-3-3z antigen we
determined the immunological and parasitological parameters since the
first vaccination, with special attention to the number of adult flukes in
the liver and the dynamic of faecal egg count.
Twenty-four female Merino-breed sheep 6 month old were used for the
study. Sheep were randomly allocated into three groups (n=8). Animals
from group 1 were immunised with the recombinant antigen rFh14-3-3z
in Montanide adjuvant (Montanide™ISA 71 VG -Seppic®). Group 2
was immunised with Montanide adjuvant (adjuvant control group) and
animals from group 3 were not immunised and remained as positive
infection control. Eight weeks after first immunisation all animals were
orally challenged with a single dose of 150 metacercariae of F. hepatica.
To assess egg output, faecal samples were individually collected weekly
from week six after challenge until the end of the trial, and were analysed
by a zinc sulphate-based flotation method using the McMaster chamber.
Eggs were first detected at 8 wpi in group 1 and 9 wpi in group 2 and 3.
Once sheep were slaughtered the livers were collected and the adult
flukes were recovered for measurement and weighing. Fluke burden of
group 1 was 52’25 ± 16’71, similar to the group 3 with a mean of 51’13
± 12’84 adult flukes. The group 2 showed a higher fluke burden of 68’13 ± 23’79 adults. On regard to the humoral immune system, indirect
ELISA showed a significant increase of IgG1 at week 3 after
immunisation, while IgG2 increased significantly its values only after
immunisation in group 2.
Due to the failure of many vaccination trials using broad variety of F.
hepatica antigens and to the immunomodulatory capacity of the liver
flukes, the study of the immune response during the early stages of the
infection is vital for a better understanding of the immunological
pathways elicited during the host-parasite interaction.
Thus, the second study was aimed at analysing the peritoneal lymphocyte
(TCD4, TCD8 and WC1+γδ), macrophage (CD14), MHCII as an antigen
presenting cell, and dendritic cells (CD83) populations of infected
animals and slaughtered at the early and late stages of infection.
Thirty-seven female Merino-breed sheep, aged 6 months, were used for
the study. Animals were randomly allocated into 3 groups according to
the slaughtering time: group 1 (n=20) (early stage) and group 2 (n=10)
(late stage) were infected with a single dose of 150 metacercariae. Sheep
from group 1 were sacrified at 1, 3, 9 and 18 days post-infection (dpi).
In the same way, animals from group 2 were slaughtered at 14 weeks
post-infection (spi). The group 3 was not infected and remained as a negative control group. Parasitological parameters from group 2 showed
a fluke burden of 67’78 ± 13’85 adults with a implantation rate of
45’19% ± 9’24. Eggs in faecal samples were first detected at week 8
post-infection, reaching the highest figures at 13 wpi. The analysis of the
different leukocyte populations was determined by flow cytometry with
diverse monoclonal antibodies. Animals sacrified at the early stages of
infection only showed a significant decrease of TCD4 at 1 and 18 dpi.
Furthermore, CD14 peritoneal population showed a decrease at 9 and 18
dpi, while MHCII and CD83 described a similar pattern with a
significant decrease at 3 and 9 dpi. Animals slaughtered at 14 wpi
increase significantly WC1+γδ subpopulation but macrophage and
dendritic cells peritoneal populations showed a significant decrease.
Continuing with a better understanding of host immunological
mechanisms against the disease, our third study aimed to analyse the
dynamic of peritoneal populations and the production of free radicals in
immunised and infected animals. For this study, Forty-five six-monthold
male merino sheep were used and randomly allocated as described:
group 1 (n=5) was not infected and not vaccinated and remained as
negative control group, group 2 (n=20) was experimentally infected with
150 metacercariae and group 3 (n=20) was immunised with rFhCL1 and
infected with 150 metacercariae. Group 1 was slaughtered at 12 wpi, while groups 2 and 3 were sacrified at 1, 3, 9 and 18 dpi. Humoral
immune response showed significant differences in IgG1 at 6 postimmunisation
in group 3 and only at 1 dpi for IgG2. Total number of
leukocytes revealed a significant increase at 9 and 18 dpi for group 2 and
3. Granulocytes from group 2 increased significantly at 9 dpi and the
three peritoneal populations at 18 dpi. Group 3 increased the number of
lymphocytes at 3 and 18 dpi, as well as macrophage and granulocyte
populations at 9 and 18 dpi. Free radical measurement was determined
with flow cytometry analysis using two different reagent: DAF-2DA for
nitric oxide and DCFH-DA for hydrogen peroxide. In relation to H2O2
production, macrophages from group 2 increased the production at 3 and
9 dpi, and granulocytes at 18 dpi. Finally, NO production in group 2
increased significantly in granulocytes at 9 and 18 dpi and in
macrophages at 18 dpi. However, group 3 increased NO production at 3
dpi in macrophages and at 3, 9 and 18 dpi in granulocytes.